{"database":"PAXDB","file_versions":[{"headers":{"Content-Type":["application/json"]},"body":{"files":{"Other":["http://pax-db.org/downloads/latest/datasets/bioprojects-abundance-files-v4.0.zip"]},"type":"primary"},"statusCode":"OK","statusCodeValue":200}],"scores":{"citationCount":0,"reanalysisCount":0,"viewCount":0,"searchCount":0},"additional":{"omics_type":["Proteomics"],"submitter":["Christian von Mering"],"species":["511145"],"full_dataset_link":["https://pax-db.org/dataset/511145/171934967"],"submitter_email":["mering@imls.uzh.ch"],"submitter_affiliation":["University of Zurich"],"sample_protocol":[""],"repository":["PAXDB"],"data_protocol":["For the rescaling, the\ndatasets are first parsed or processed such that the data reflect\nproportional abundances of whole protein molecules\n(i.e. proportionality to counts of complete, individual protein\nmolecules, not to molecular weights, protein volumes, or digested\npeptides). In the case of spectral counting data protein. The proportional abundances are rescaled linearly to add up\nto one million; this means the abundance of each protein of\ninterest is finally expressed in (parts per million,) relative to\nall other proteins in a sample. \nFor a given protein abundance dataset, we then compute\nthe absolute log abundance ratios of all pairs of proteins\nannotated to be functionally linked. The median of these absolute\nlog abundance ratios represents an indirect quality\nmetric: the closer it is to zero, the better (i.e. the more there\nis consistency between abundance values and functional annotations\nsuch as protein complexes or pathways). We then\ncompute a background expectation for this metric, by permuting\nthe abundance values in a given dataset randomly,\nand recomputing the median log abundance ratios. The permutation\nis repeated several times, yielding a distribution of\nmedians. The actually observed median is then expressed as a\nZ-score distance to the random distribution ofmedians—this\ndistance is termed the interaction consistency score."],"pubmed_abstract":["Data-Independent Acquisition (DIA) is a method to improve consistent identification and precise quantitation of peptides and proteins by mass spectrometry (MS). The targeted data analysis strategy in DIA relies on spectral assay libraries that are generally derived from a priori measurements of peptides for each species. Although Escherichia coli (E. coli) is among the best studied model organisms, so far there is no spectral assay library for the bacterium publicly available. Here, we generated a spectral assay library for 4,014 of the 4,389 annotated E. coli proteins using one- and two-dimensional fractionated samples, and ion mobility separation enabling deep proteome coverage. We demonstrate the utility of this high-quality library with robustness in quantitation of the E. coli proteome and with rapid-chromatography to enhance throughput by targeted DIA-MS. The spectral assay library supports the detection and quantification of 91.5% of all E. coli proteins at high-confidence with 56,182 proteotypic peptides, making it a valuable resource for the scientific community. Data and spectral libraries are available via ProteomeXchange (PXD020761, PXD020785) and SWATHAtlas (SAL00222-28)."],"pubmed_title":["A comprehensive spectral assay library to quantify the Escherichia coli proteome by DIA/SWATH-MS."],"pubmed_authors":["Midha Mukul K MK, Kusebauch Ulrike U, Shteynberg David D, Kapil Charu C, Bader Samuel L SL, Reddy Panga Jaipal PJ, Campbell David S DS, Baliga Nitin S NS, Moritz Robert L RL"],"data_synonyms":["Add, DmelCG43443, ADD, ADD-87, Hts-RC, data, AU023367, Data Set, protein complex, supply, Proteins, Ovhts, Gene, HtsRC, CG9325, protein, neutral molecular compounds, protein-containing complex, Dmel_CG9325, Xt, Peptide, 1B1, add, Polypeptides, anon-EST:Posey9, protein polypeptide chains, native protein, peptido, htsRC, GLI3-190, natural protein, polypeptide chain, Add-hts, Protein, CG43443, Gene Products, l(2)k14523, Dmel_CG34197, l(2)00634, median, Ovhts-RC, background, supply and distribution, protein aggregate, all_pairs, molecule, Bph, 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